• Accueil
•  > La recherche
•  > Plates-formes
•  > Imagerie et Cytométrie
•  > Cytométrie en flux

Cytométrie en flux et tri cellulaire

• Matériel
• Tarifs
• Principes utilisés
  
• Descriptif des systèmes

Matériel

Tarifs

Principes utilisés

• Le tri et l'analyse des progéniteurs hématopoïétiques humains ou murins sur 5 ou 6 couleurs simultanément
• Le tri et l'analyse des mégacaryocytes sur lesquels sont associées des études de la ploïdie permettant des tris 4 voies pour l'isolement des populations 2n, 4n, 8n, 16n...
  
• Le tri à haute vitesse de cellules rares (IKDC, cellules Treg), cellules NK
  
• La détection de l'apoptose, seule ou simultanément avec la chute du potentiel membranaire de la mitochondrie et la mortalité cellulaire
• L'analyse fonctionnelle de la surexpression ou de l'extinction de gènes (shRNA)
• Les cycles cellulaires
• L'étude de la prolifération cellulaire
• L'étude des flux calciques
• L'analyse et le tri des cellules souches
• Phénotypages 8 couleurs
• La détermination de la longueur relative des télomères par " Flow Fish ".../...

Descriptif des systèmes

• Le Cytomètre en flux analyseur - Facscalibur permet l’analyse simultanée de 4 paramètres de fluorescence (530, 570, LP670 et 660 nm), soit 6 paramètres au total avec la morphologie (taille et granulosité). L’acquisition et le retraitement des données sont effectués via le logiciel Cellquest™ sur station Mac.
  
• Le Cytomètre en flux Analyseur - LSRII permet l’analyse simultanée de 13 paramètres de fluorescence, soit 15 paramètres au total avec la morphologie (taille et granulosité). Compensation pendant et après acquisition. Traitement des données sur le logiciel DiVa (PC) ou sur le logiciel CellQuest pro (MAC).
  
• Le Trieur de cellules MoFlo est doté d’un cloneur de cellules (Cyclone) servant à déposer un événement unique dans un des puits d’une plaque 24, 72, 96, 384 ou 1536 puits ou encore sur lames. Ce cytomètre permet d’analyser simultanément 9 paramètres de fluorescence, soit 12 paramètres avec la morphologie (taille et granulosité) et le pulse width, permettant de distinguer les agrégats des événements uniques. Les diamètres des buses disponibles sont de 50, 70, 80, 90, 100, et 200μm. L’acquisition et le retraitement des données sont effectués via le logiciel Summit™ sur station PC.
  
• Le Trieur de cellules Influx est équipé d’une hotte biosécurité type HEPA (Environnement P2). Equipé d’un tri 4 voies, il effectue également le clonage sur plaques multipuits ou encore sur lames. Ce trieur permet d’analyser simultanément 14 paramètres de fluorescence, soit 17 paramètres avec la morphologie (taille et granulosité) et le pulse width, permettant de distinguer les agrégats des événements uniques. Les diamètres des buses disponibles sont de 70, 100, 140 et 200μm. L’acquisition des données est effectuée via le logiciel Spigot™ et le traitement des données via le logiciel FlowJo™, tous deux sur stations PC.
  
• Le Trieur de cellules Aria III est équipé d’un tri 4 voies, l’instrument est également doté d’un cloneur de cellules (BD CDU), pour le dépôt d’événement unique dans un des puits d’une plaque 24, 96, ou 384 puits ou encore sur lames ou filtres. Ce trieur permet d’analyser simultanément 10 paramètres de fluorescence, soit 13 paramètres avec la morphologie (taille et granulosité) et le pulse width, permettant de distinguer les agrégats des événements uniques. Les diamètres des buses disponibles sont de 70μm, 85μm, 100μm et 130μm. L’acquisition des données est effectuée via le logiciel FACSDiVa™ sur station PC.