La recherche
Remonter d’un niveau

UMR 8126

Responsables
Marc Lipinski
Yegor Vassetzky

Équipe de Marc Lipinski et Yegor Vassetzky

Domaines chromatiniens au cours de l'embryogenèse et de la cancérogenèse

Présentation de l'équipe

Marc Lipinski, DR CNRS
Yegor Vassetzky, DR CNRS
Irina Pirozhkova, IR CNRS
Andrei Pichugin, post-doc
Elena Kim, post-doc
Jeanne Allinne, doctorante
Petr Dmitriev, doctorant
Luiza Stankevicins, doctorante
Manel Klibi, doctorante
Ewa Zlotek, Master 2

Travaux et objectifs

L’expression génique dépend de la conformation de la chromatine. Les régions chromosomiques transcriptionellement actives sont déterminées par des modifications affectant l’ADN et les protéines de la chromatine. Ces modifications épigénétiques qui n’influencent pas la séquence codante sont réversibles. Les études récentes ont démontré qu’elles jouaient un rôle important dans les maladies génétiques et les cancers. L’expression génique est également régulée par l'organisation de la chromatine à un niveau supérieur. Plusieurs niveaux d'organisation existent dans le noyau cellulaire, au niveaux des nucléosomes, des fibres et des boucles ou domaines. Les chromosomes quant à eux occupent des territoires bien délimités à l’intérieur du noyau. L’équipe s’intéresse aux anomalies de l’organisation chromatinienne, tout particulièrement dans deux pathologies : le lymphome du manteau et la dystrophie facio-scapulo-humérale. 

Régulations épigénétiques dans le lymphome du manteau

Le lymphome du manteau (LM) est un lymphome de type B développé à partir des cellules du manteau, une couronne de lymphocytes situés à la périphérie du centre folliculaire des ganglions lymphatiques. Ce lymphome se caractérise par une translocation chromosomique constante, t(11;14)(q13;q32). Avec une survie médiane comprise entre 3 et 4 ans, le pronostic associé au LM est plus sombre que pour la plupart des autres lymphomes et aucun traitement ne permet actuellement d’obtenir une rémission complète et durable.
La translocation 11;14 provoque une surexpression constante dans les cellules lymphomateuses du gène de la cycline D1 et d’autres gènes de la région 11q13 et ce, quelle que soit la distance entre les gènes et le point de cassure sur le chromosome 11. Le chromosome 11 est situé dans une région périphérique du noyau cellulaire, dans un contexte largement hétérochromatique et donc probablement rétif à la transcription. A l’opposé, le chromosome 14 est situé dans une zone plus centrale du noyau cellulaire qui est considérée comme essentiellement euchromatique et donc propice à la transcription. Nous travaillons sur l’hypothèse que la translocation 11;14 puisse provoquer la transposition de la région 11q13 vers une zone d’euchromatine, déplacement qui serait la cause de l’augmentation générale constatée des niveaux transcriptionnels de gènes présents sur le fragment chromosomique déplacé. Des résultats préliminaires semblent corroborer cette hypothèse (Figure 1).

Chromatine et expression génique dans la dystrophie facio-scapulo-humérale

 La dystrophie musculaire facio-scapulo-humérale (FSHD) est une maladie génétique autosomique dominante caractérisée par une atteinte des muscles du visage, des épaules et des bras. La FSHD est l’une des maladies musculaires héréditaires les plus répandues : en France, une personne sur 20 000 en est atteinte. Cette maladie est associée à une diminution du nombre de copies d’une séquence répétée, la séquence D4Z4, localisée dans le locus 4q35 sur le chromosome 4. La fonction potentielle de la séquence D4Z4 reste inconnue à ce jour.

Nous avons analysé la capacité de D4Z4 à moduler la transcription, et montré l’existence d’une séquence activatrice de la transcription au sein de D4Z4. Nous avons aussi démontré que le locus 4q35 contenait un site d’attachement à la matrice nucléaire (MAR) qui sépare la séquence activatrice de D4Z4 et les gènes FRG2, FRG1 et ANT1 situés du côté centromérique sur le chromosome 4 et qui possède des propriétés d’insulateur. Ce site MAR est délocalisé chez les malades (Figure 2) provoquant le passage d’un signal d’activation de D4Z4 vers les gènes voisins (Figure 3).
 

Publications

Eivazova E. R., Gavrilov A., Pirozhkova I., Petrov A., Iarovaia O.V., Razin S. V., Lipinski M., VASSETZKY Y. S. (2009) Interaction /in vivo /between the two matrix attachment regions flanking a single chromatin loop. J. Mol.Biol., 386: 929-937.**
Klochkov, D.B., Gavrilov, A.V., VASSETZKY, Y.S., Razin S.V. (2009) Early replication timing of the chicken ?-globin gene domain correlates with its open chromatin state in cells of different lineages. Genomics, 93:481-486.
Sjakste, T., Bielskiene K., Röder M., SugokaO., Labeikyte D., Bagdoniene L., Juodka B., VASSETZKY, Y.S. and Sjakste N. (2009) Development-dependent changes in the tight DNA-protein complexes of barley on chromosome and gene level. BMC Plant Biology, 9:56.
Toujani S., Dessen, P., Ithzar, N., Danglot, G., Richon, C., VASSETZKY, Y.S., Rober, T., Lazar, V., Bosq, J., Da Costa, L., Pérot, C., Ribrag, V., Patte, C., Wiels, J., and Bernheim, A. (2009) High resolution Genome-wide analysis of chromosomal alterations in Burkitt’s lymphoma. PLoS ONE, 4: e7089.
VASSETZKY, Y.S., Ioudinkova, E.S., and Razin, S.V. (2009) MARs Wars: heterogeneity and clustering of DNA-binding domains in the nuclear matrix. Biopolymers and cell, in press

Publications 2008-2009

Collaborations nationales et internationales

Vanderbilt University, Nashville, USA
Institut de Biologie du Gène, Moscou, Russie
Centre National d’Hématologie, Moscou, Russie
Institut de Génétique Humaine, CNRS UPR 1142, Montpellier
INSERM ER125, Montpellier

Activités d'enseignement

Marc Lipinski, Directeur-adjoint aux études de l'Ecole Doctorale de Cancérologie : Biologie - Médecine - Santé
et responsable de la filière Biologie et Génétique de l’année M2 du Master de Cancérologie (Université Paris-Sud XI)

Protocoles utilisés

Biologie cellulaire
Culture et transformation de cellules de mammifères
Techniques standard de levures
Création de transfectants stables et transitoires
Marquage par immunofluorescence et observation en microscopie optique
Explorations cellulaires par cytométrie en flux
Techniques d'analyse des domaines chromatiniens
Purification et analyse de matrice nucléaire
Hybridation in situ (FISH en 3D)
Empreintes génomiques in vivo et in vitro
Étude des domaines chromatiniens sur puces à ADN
Biologie moléculaire
Purification d'ADN génomique et d'ARN
Clonage et transformation bactérienne
PCR
Séquençage
Interférence ARN
Analyse de blots par Southern, Northern
Criblage de banques
Criblage d'interactions protéiques par système Simple-Hybride
Étude du transcriptome sur puces à ADN (ADNc et oligos)
Biochimie
Préparation d'extraits cellulaires et nucléaires
Électrophorèses en gel
Analyse des protéines par western et far-western
Immunoprécipitation
Chromatographie
HPLC
Expression de protéines recombinantes 
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